神經(jīng)細胞（神經(jīng)元）不易培養(yǎng)，只有在適宜情況下，如接種在膠原底層上，或加入神經(jīng)生長因子和膠質細胞因子時，可出現(xiàn)一定程度的分化，長出突起等現(xiàn)象，但很難使之增值。而神經(jīng)膠質細胞是神經(jīng)組織中比較容易培養(yǎng)的成分。
人、鼠等腦組織即可用于神經(jīng)膠質細胞培養(yǎng)，不僅能獲得生長的膠質細胞，也可形成能傳代的二倍體細胞系。一般說來，膠質細胞在培養(yǎng)中生長不穩(wěn)定，不易自發(fā)轉化，但對外界因素仍保持很好的敏感性，可用ROUS病毒和SV4等誘發(fā)轉化。
一． 設備：
無菌操作設備。
二． 大型設備
CO2培養(yǎng)箱：恒溫5%、10%CO2維持培養(yǎng)液中pH值。
倒置顯微鏡：用于每天觀察貼壁細胞生長情況。
解剖顯微鏡，用于準確地取材。
常溫冰箱：-4℃，用于保存各種培養(yǎng)液，解剖液和鼠尾膠。
低溫冰箱：-20℃--80℃，用于儲存血清酶，貴重物品和試劑。
電熱干烤箱：用于消毒玻璃器皿。
高壓消毒鍋：用于消毒培養(yǎng)皿，手術器械。
過濾器：配制解剖液、培養(yǎng)液，必須過濾后才可使用，以去除細菌。
滲透壓儀，pH劑，天平等。
三． 培養(yǎng)器皿及手術器械
1 培養(yǎng)皿：常用35mm塑料及玻璃皿，解剖取材用15mm-90mm直徑。
2 培養(yǎng)板，24-40孔，可用于開放培養(yǎng)。
3 培養(yǎng)瓶：
4 吸管，常用1，5，10ml，均需泡酸、洗滌、滅菌后方可使用。
5 各類培養(yǎng)液貯存器。
6 小型手術器械。
準備：
一 配制培養(yǎng)液
（1） 解剖液：以無機鹽（去除Ca2+, Mg2+）加葡萄糖配制成PBS緩沖液，保持一定的滲透壓和pH值。
（2） 基礎培養(yǎng)基（MEM）：主要為多種氨基酸，加入葡萄糖，雙蒸餾水溶解。
（3） 接種培養(yǎng)液：用于胰酶消化后的細胞分散，做成細胞懸液，其成分為MEM含1%谷氨酰胺，另加入10%馬血清，當天配制。
（4） 維持培養(yǎng)液：接種后24h，全部換成此液，后每2周換一次，每次換1/2。其成分為MEM中含5%馬血清，1%谷氨酰胺，及適量的支持性營養(yǎng)物質。
二 培養(yǎng)基質
常用鼠尾膠、小牛皮膠，多聚賴氨酸，再涂膠
三 消毒培養(yǎng)皿的備用。
所有培養(yǎng)器皿均需清水沖洗2-3d，達兩次ddH2O，每遍洗刷3-4次，加塞包裝，置于烤箱中干燥消毒，于培養(yǎng)前1天進行。
神經(jīng)細胞分散培養(yǎng)
（一） 選材 常用胚胎動物或新生鼠神經(jīng)組織。雞胚常用胚齡6-8d，新生鼠或胎鼠（12-14d）或人胚胎。不過也有認為與組織相關。如大白鼠胚胎以19d為宜，小鼠以18d為宜，大鼠紋狀體以10d為宜；若紋狀體與黑質聯(lián)合培養(yǎng)的大鼠胚，則黑質以13d，紋狀體18-21d為宜；小腦以20-21d小鼠胚胎，所獲蒲氏細胞成活率高，顆粒細胞正在分化；脊髓與DRG聯(lián)合培養(yǎng)，常用4-7d雞胚或12-14d小鼠胚胎，取材易，神經(jīng)成活率高。
（二） 取材。腦則取出相應組織，在解剖液中先剪碎，以使胰酶消化。脊髓則固定于瓊脂板上，用小刀將其要成背腹兩側，分別培養(yǎng)。
（三） 細胞分離與接種。神經(jīng)組織用0.125-0.25%胰蛋白酶在37℃孵育30min，移入接種液，停止消化，并洗去胰蛋白酶液，用細口吸管吹打細胞懸液，使其充分分散，如此多次，待沉淀后吸出上層細胞懸液，計數(shù)，預置細胞密度，接種于培養(yǎng)皿（1×106），做電生理應為5×105或更低。
（四） 抑制膠質細胞生長。培養(yǎng)3-5d后，也有人認為培養(yǎng)7d后，用阿糖胞苷，或5-FU抑制神經(jīng)膠質細胞的生長。
（五） 觀察。接種6-12h，開始貼壁，并有集合現(xiàn)象，細胞生長突起明顯，5-7d膠質細胞增生明顯，7-10d膠質細胞成片于神經(jīng)細胞下面，形成地毯，2周時神經(jīng)細胞生長最豐滿，四周暈光明顯，一個月后，有些神經(jīng)細胞開始退化，變形，甚至出現(xiàn)空泡，一般培養(yǎng)2-4周最宜。
但神經(jīng)細胞只能增大，而不能增殖，只能原代，不能傳代，不會有細胞周期，而且隨培養(yǎng)時間的延長，細胞數(shù)量在下降，但膠質細胞可以，神經(jīng)膠質細胞也可以。在培養(yǎng)過程中，早期9-12d時，有較多的神經(jīng)細胞死亡，這是第一次死亡階段，應注意保持條件的恒定。在此之后存活下去的細胞一般突起長而多，且相互形成突觸。
（六） 常用培養(yǎng)細胞實驗有：
FCM的蛋白總量分析；膜片鉗與離子通道的分析；免疫組化分析；
但免疫組化分析應注意，由于抗體直接作用于活細胞，不易穿透活細胞，故對核內抗原定位時，首先考慮膜對抗體的通透性問題。常用化學試劑以增加其通透性或采用冰凍方法解決。
在免疫組化中，或其它組織學染色中，常用不同的染色方法以區(qū)分不同細胞，如半乳糖腦苷脂對小樹突膠質細胞標記明顯；GFAP對星形膠質細胞具有特異性染色等。這對研究神經(jīng)系統(tǒng)中膠質細胞功能具有極大的應用價值。神經(jīng)膠質細胞以往多被忽視，其在腦血管疾?。ㄈ缛毖該p傷）、退行性疾?。ㄈ?/span>AD、PD）、損傷后膠質細胞的填充等具有不可忽視的作用。它也是神經(jīng)細胞功能和營養(yǎng)支持的物質基礎。
